-------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------D01:10.3969/j.issn.l005-6521.2018.16.012
大孔树脂吸附分离s-腺苷甲硫氨酸的研究
张晓青,杜瑾,张爱君,郝建安,曹军瑞A,王树2
(国家海洋局天津海水淡化与综合利用研究所,天津300192)
摘要:采用大孔树脂吸附法对S -腺苷甲硫0酸(S -adenosylmethionine,SAM )纯化工艺进行研究。通过考察上 柱流速、浓度、pH等因素对S-腺苷甲硫氨酸动态吸附的泄露曲线和树脂饱和吸附量影响,确定S-腺苷甲硫氨酸树 脂动态吸附的最佳工艺条件为:上柱流速!.6 0:/03+,进样料液浓度5.\" g/L,初始pH=5.0。用0.5瓜,//:硫酸以流速 3.6 mL/min洗脱吸附饱和树脂,产品得率为92.57 %。树脂重复使用5次后其对SAM的吸附量和解吸率分别下降了 13.68 mg/g 和 6.76 %。
关键词:S-腺苷甲硫氨酸;动态吸附;大孔弱酸性树脂;解吸
Study on Adsorption and Separation of S-adenosylmethionine by Macroporous Resin
ZHANG Xiao-qing, DU Jin,ZHANG Ai-jun, HAO Jian-an, CAO Jun-ruiP, WANG Shu-xun (institute of Seawater Desalination and Multipurpose Utilization, SOA,Tianjin 300192, China)
Abstract: The purification process of S-adenosylmethionine was studied by macroporous resin adsorption. By
investigating the effect of flow rate, concentration and pH value on leakage curve and saturated adsorption capacity of S-adenosylmethionine during resin dynamic adsorption,the optimum purification conditions were obtained as follows: the flow rate was 3.6 mL/min, the concentration of feed liquid was 5.0 g/L,the initial pH was
5.0. The saturated resin was eluted with 0.5 mol/L sulfuric acid at a flow rate of 3.6 mL/min, and the yield of S-
adenosylmethionine was 92.57 %. The adsorption and desorption properties of S-adenosylmethionine decreased by 13.68 mg/g and 6.76 % respectively after repeated use for 5 times.
Key words: S-adenosylmethionine#dynamic adsorption#macroporous weakly-acid resins#desorption
引文格式:
张晓青,杜瑾,张爱君,等.大孔树脂吸附分离S-腺苷甲硫氨酸的研究[J].食品研究与开发,2018,39(16):60-63 ZHANG Xiaoqing,DU Jin,ZHANG Aijun,et al. Study on Adsorption and Separation of S-adenosylmethionine by Macroporous Resin[J].Food Research and Development,2018,39^ 16):60-63
S-腺昔甲硫氣酸(S-adenosylmethionine,SAM)是
微生物发酵法[5,化学合 本高 密高
SAM
存在产率低、成
作
包
[6。
L-甲硫氨酸,
广泛存在生物体内代谢中间体,是人体内
,与 关 ,SAM
键。SAM
方
化
工艺是 化合
生物化
用
,微生物
SAM工业化生
核酸生物代[2-3]。广用的关合成法[4]和 *
谢密切相关[1]。临床研究明S-腺苷甲硫氨酸 通过在微生物培养基中
在细胞内催化ATP (腺嘌呤核苷三磷酸,adeno sine -
triphosphate)与L-甲硫氨酸反应,合成较高浓度的 SAM。用
生产SAM微生物 [8]
[9]是
SAM
[7,
中
基金项目:海洋公益性行业科研专项项目(201505032-2);中央级 公益性科研院所基本科研业务费专项基金项目(K-JBYWF-2017-
T08)。
微生物 。,
SAM 是 内 物, 化 程 [10] 是
微生物 。 。
性
性SAM盐制
[11]是SAM主要分离方性物质之间相
剂之间
作者简介:张晓青(1983—),女(汉),工程师,硕士,研究方向:海洋 环境微生物。
*通信作者:曹军瑞,高级工程师,研究方向:海水淡化及净水技术。
过程,是根据溶质离子所带电荷与
分离提取
张晓青,等:大孔树脂吸附分离S-腺苷甲硫氨酸的研究
静电相互作用力的差别进行溶质分离的一种层析方 法[12],具有操作工艺简单、有机溶剂用量少、成本低等优 点,目前离子交换树脂分离纯化已应用于胡萝卜素[13]、 糖类[14]等天然产物的提取纯化。
在前期静态吸附研究基础上[15],开展大孔树脂动 态吸附SAM工艺的研究,考察进样料液浓度、初始
-H、流速等对泄漏 树脂吸附量的 ,优化
SAM树脂吸附工艺,
期 SAM的
化分离纯化
提 。1
材料与方法
1.1试验材料
SAM标准品(A2408-100 mg,纯度!80 6,色谱
纯):Sigma公司;SAM粗品” I 物科
有公 D112树脂:大孔
离子树脂,
度范围 0.315 mm! 1.25 mm,粒径 0.4 mm~0.7 mm,淡黄
色, 料公
浓
、
化 、
等
天
天化 ,
分析纯
1.2方法 1.2.1树脂的活化
树脂化:取量大孔树脂D112,用去离子 清洗干净;用3倍体积的1 m=l/L HA1 2 h后,用 离子
然后用3倍体积1 m=l/L NaOH
2h,用去离子 用3有
1 mol/LHGl
4h,用去离子
,用。1.2.2不同条件对动态吸附的
称取一量化树脂, 析
子采用湿法
,
析 ! = 17mm,
度:H=
(16±0.1) cm,柱床体积约 36.2mL,温度为(25±1)#。 分别测定不同上柱流速1.2、2.4、3.6、4.8 mL/min,SAM 溶液初始浓度 2.0、5.0、8.0 g/L,初始-H 为 3.0、5.0、7.0
吸附流出液SAM浓度,
流出液浓度与进料液浓度相等,考察 大孔树脂D112吸
附SAM的泄漏
吸附容量化。
1.2.3不同流速对D112解吸效果的影响
取一 量吸附
树脂 D112
析
,
玻璃层析柱!=17 mm,装填高度H=(16±0.1)cm,温度 为(25±1 )#〇以静态试验[13]筛选出0.5 mol/L H2SO4为洗 剂,对吸附
树脂进行动态
,分
不同流速2.4、3.6、4.8 mL/min下洗脱液SAM浓度,直
吸流 液 SAM 浓度1.2.4
SAMSAM
采用超高效液相色谱测定。色谱柱G18
反相柱(BEGH G18 2.1 mmx50 mm,1.7 \"m);流动相:
61
-
0.01 mol/L 甲酸铵,-H 3.0〜4.0;流速 0.3 mL/min;柱 温为30#。PDA检测器的检测波长为254 nm。SAM 标准品及分析样品在进样分析前都使用022 \"m的微孔 滤月鍵行过滤。
配制浓度为1 000 mg/L SAM标准溶液,准确移取 一定量标准溶液,稀释浓度分
50、100、200、400、
800、1 000 mg/L,利用超高效液相色谱测定溶液SAM 浓度。分别连续进样3次,SAM浓度(!,mg/L) 横坐标,吸收峰面积(\").纵坐标,绘制标准 ,计
算其标准
回归方程
\"=0.009 8!+0.013 9,$2=
0.999 9。1.2.5计算方法
树月旨
吸附量%、泄漏值&、吸附率p、SAM洗脱
率(分按照公式(1)〜(4)计算:
%=
(C0-C1)*
+( 1))〇
( 2)p6:=
)0C-1
)1 x100( 3)y/6=^2%-1
*1 x100( 4)
式中为树脂的饱和吸附容量,mg/g;C。为SAM 的初始浓度,mg/L;C1为吸附后总料液SAM的浓度,
mg/L;* 吸附料液总
,L;& 泄漏值,吸附
SAM浓度初始浓度的比值;+ 树脂量,g;c,吸附
后SAM的浓度,mg/L;C2
吸溶液中SAM的浓度,mg/L; %1
树脂的吸附总量,mg;*1为洗脱液的
,L;p 吸附率,6;( 率,6。
2
结果与讨论
2.1
上样流速对树脂D112吸附性能的影响
在SAM初始浓度=5.0 g/L,PH=5.0,分别调节流速 为1.2、2.4、3.6、4.8 mL/min,流速对SAM泄漏曲线的影
图1不同流速下SAM的泄漏曲线
Fig.1 Leakage curves at different velocity of flow
张晓青,等:大孔树脂吸附分离S-腺苷甲硫氨酸的研究
分离提取
响见图1。
决定大孔树脂吸附效率一个重要影响因素是流 速。流速既影响SAM和树脂之间接触时间,又能影 响树脂柱的处理能力[16]。从图1可以看出,随着流速 的增加,穿透时间提前,当流速从1.2 mL/min增加到4.8 mL/min时,SAM穿透时间从13 5增加到53 5。这 是由于流速增加,SAM溶液在柱子中停留时间减少, 不利于料液中的SAM分子在树脂中进行颗粒扩散和 膜扩散,从而影响离子交换过程%17]。流速对树脂饱和吸 附容量也有一定影响,流速为1.2、2.4、3.6、4.8mL/min 时,树脂D112饱和吸附容量分别为155.61、200.12、 203.13、197.31 mg/g。从
可以看出当流速大于
2.4 mL/min时,流速对树脂总吸附量和单位饱和吸附 容量影响不,树脂到和时间减少。综合考虑生 产效率和SAM稳定,选 3.6mL/min
流速。2.2
对树脂D112吸附性能影响
在初始pH=5.0,流速=3.6 mL/min,SAM溶液浓度 分 3.0、5.0、8.0 g/L时对泄漏曲线的影响图2。
图2
不同浓度下SAM的泄漏曲线
Fig.2 Leakage curves with different concentration
从图2可以看出,随着料液中SAM浓度从2.0 g/L 増加到8.0 g/L,穿透时间从47 5缩短到13 5。这是因 随着进料液
增加,料液树脂中SAM g
,
增
,加 离子交换过程,穿透时间
提前。在料液
分
2.0、5.0、8.0 g/L时,
树脂饱和吸附容量分别为161.31、203.13、204.21 mg/g, 可以看出随着料液 增加树脂饱和吸附量
增
大,当
增到8.0 g/L时,树脂和吸附量增加
减少,这是因 孔树脂D112对SAM吸附合
Langmuir单分子吸附,SAM浓度的增加,吸附量
増加,但存在
的吸附量。综合考虑SAM的吸附率
和树脂的和吸附量,选E.0g/L
进样料液 。
2.3 ?H值对树脂D112吸附
影响
在SAM溶液浓度=5.0 g/L,流速=3.6 mL/min,分别
pH
3.0、5.0、7.0,pH 对
的影
响见图3。
图3不同pH条件下SAM的泄漏曲线
Fig.3 Leakage curves at different pH value
当料液初始pH值分别为3.0、5.0、7.0时,树脂
D112穿透时间分
10、20、15.5 5,树脂饱和吸附容
量分别为44.18、203.13、164.37 mg/g。从结果可以看 出,当SAM溶液?H值从3.0
到5.0时,穿透时间
增加,树脂和吸附容量增 这是由于树脂
D112 于
树脂,在?H=3.0时解离
,SAM
主要以SAM2+
在。随着溶液中?H
到5,
SAM的离子价态降低,由SAM3+、SAM2+变为SAM1+,因
此SAM分子合的树脂
增加。当?H 从
5.0上升到7.0,溶液中SAM主要以SAM0
在,
SAM离子
,溶液中 离子SAM&+
树脂中的交换,穿透时间提前,和交换量
减少%18( ,SAM在 加稳定,因此
选择?H=5.0
树脂D112
吸附
。
2.4 吸流速对解吸效果的影响前
[15],选
0.5 mol/L H2SO4 作
为洗脱剂,不同洗脱流速2.4、3.6、4.8 mL/min对S-腺
的
效
图4。
7o
6 o5 o(一/如)/4 3o 2侧
o1餐
o4.8 mL/min o
1A
3.6 mL/min IV2.4 mL/min
S0 50 100 150 200 250 300
洗脱液体积/mL
图4
不同流速硫酸的洗脱曲线
Fig.4 Desorption effect with different velocity of H2SO4 flow
从图4可以看出,不同流速条件下,SAM洗脱曲
,但是随着
流速从2.4 mL/min增加到
4.8 mL/min,顶
右移,达到
时所
分离提取
张晓青,等:大孔树脂吸附分离S-腺苷甲硫氨酸的研究
需要洗脱液体积也增加,从48 mL增加到60 mL,同 时洗脱液中SAM最大浓度降低,从59.39 g/L下降到 44.88 g/L。这是由于流速较慢时,洗脱剂硫酸可以和树 脂充分接触,洗脱越完全。解吸收集时间越短,解吸液 有效浓度越高,越有利于下一步的结晶过程,因此选 用3.6 mL/min作为最佳解吸速度,在此条件下,'AM 解吸率达到92.57 5。2.5大孔树脂D112再生性能
在确定最佳动态吸附和解吸流速条件下,利用树 脂D112进行5次吸附-解吸循环试验,考树脂
SAM吸附-解吸性能的稳定性,结
5
。
05
o 1Zoo
(
9^208
o o 7o%2156o/) o10 5
/吸附量 4o嫌_ 5
-o釤銮o 〇-解吸率
32o媒1釤
3
4
5
o o
2
0
o次数
o
图5
循环使用对树脂D112饱和吸附量和解吸率的影响
Fig.5 Adsorption capacity and recovery yield after the reuse of
resin D112
从图5可以看出,树脂D112连续使用5次后对
SAM的吸附量和解吸率略有下降,吸附量下降了 6.765,
说明大孔树脂D112定性较好,可用于SAM的分离 纯化。3
结论
研究进样料液浓度、上样流速、初始pH值对大 孔弱酸树脂D112吸附S- 硫酸的
和吸附的影响,
较佳动态吸附
条件:流
速3.6 mL/min,料液浓度5.0 g/L,初始 用5次吸附量和解吸率定,可 次 用。 参考文献: [1] LU S C. S-Adenosylmethionine [J]. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 2000, 32(4):391-395[2] BOTTIGLIERI T. S -Adenosyl -L -methionine (SAMe): from the bench to the bedside-molecular basis of a pleiotrophic molecule [J]. American Journal of Clinical Nutrition, 2002, 76(5):1151-1157 [3] LIEBER CS. S-adenosyl-L-methionine: its role in the treatment of liver disorders[J]. American Journal ofClinical Nutrition, 2002,76(5): 1183-1187 [4] Niu W, Cao S, Yang M, et al. Enzymatic synthesis of S-adenosylme- thionine using immobilized methionine adenosyltransferase variants on the 50-mM scale [J/OL]. Catalysts, 2017, 7(8): 238[2017-8-17]. http://www.mdpi.com/journal/catalysts , DOI:10.3390/catal7080238[5] CHUN LY, TAO ZH, XIN CH. Biosynthesis of S-Adenosylmethion- ine by Magnetically Immobilized Escherichia coli Cells Highly Ex - pressing a Methionine Adenosyltransferase Variant[J/OL]. Molecules, 2017, 22(8):1365[2017-8-18].http://www.mdpi.com/journa]/molecules, DOI:10.3390/molecules22081365 [6] 张渝杰,詹良静,张新宜,等.响应面法优化S-腺苷蛋氨酸发酵培 养基的研究[J].中国抗生素杂志,2013,38(4): 255-260 [7] CAO X, YANG M, XIA Y, et al. Strain improvement for enhanced production of S-adenosyl-L-methionine in Saccharomyces cere - visiae, based on ethionine-resistance and SAM synthetase activity[J]. Annals of Microbiology, 2012, 62(4):1395-1402 [8] LI MH, MENG XM, DIAO EJ, et al. Productivity enhancement of S- adenosylmethionine in Saccharomyces cerevisiae, using n-hexade- cane as oxygen vector [J]. Journal of Chemical Technology & Biote chnology, 2012, 87(10):1379-1384 [9] HARIT R K, BALAMURALI M, MEENAKSHISUNDARAM S. Enhancing precursors availability in pichia pastoris for the overproduction of S-adenosyl-L-methionine employing molecular strategies with process tuning[J]. Journal of Biotechnology, 2014, 188: 112-121 [10] 刘惠,吴坚平,林建平,等.S-腺苷-L-蛋氨酸的分离纯化及其稳 定产品的制备[J].中国生化药物杂志,2002,23(6): 284-287 [11] 傅梦月, , .重组毕赤酵母中 硫氨酸的纯化[J]. 食品与发酵工业,2015,41(6): 15-19 [12] 陈勇.以离子交换法为核心典型胞外(米多美素)和胞内(S-腺苷 甲硫氨酸)产物制备技术的而研究[D].:浙江大学,2004:7-8 [13] 赵昕,于一帆,苏婉莹,等.大孔树脂吸附分离黑胡萝卜红色素的 研究[J].食品研究与开发,2017,38(23):38-43 [14] 张洪坤.大孔树脂吸附纯化茯苓多糖工艺研究[J].食品研究与开 发,2017,38(23): 67-71 [15] 杜瑾,张爱君,晓青,等.大孔弱酸树脂对S-腺苷-甲硫氨酸静 态吸附性能[J].食品与发酵科技,2017,53(6): 17-21 [16] 刘军伟,李啸晨,侯婴惠,等.大孔树脂纯化生姜多酚的研究[J].食 品研究与开发,2017,38(17): 35-39 [17] 康家胜,方春,张静,等.AB-8型树脂对无患子皂苷的动态吸附与 解吸性能[J].天然产物研究与开发,2011,23(4): 709-712 [18] 姚进孝.S- -L-甲硫氨酸分离纯化 研究[D].北京:北京 化工大学,2008: 41-45 收稿日期+ 2018-02-09 因篇幅问题不能全部显示,请点此查看更多更全内容